geli – Übersetzung – Keybot-Wörterbuch

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Keybot 41 Ergebnisse  hc-sc.gc.ca
  OPFLP-10 Detection of n...  
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6.24 Kageyama primers (COG2F and COG2R) and TaqMan® probe (RING2) for the detection of NoV GII by real-time RT-PCR (See section 10.1 for DNA sequences).
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6.27 Trousse de clonage TOPO® TA (avec vecteur pCR®2.1-TOPO®) et One Shot® TOP10 ElectrocompT
  OPFLP-10 Detection of n...  
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Stock solutions required for 102 reactions tubes using Kageyama NoV GII system
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Solutions mères requises pour 102 réactions à l'aide du système Kageyama pour les NoV de GII
  OPFLP-10 Detection of n...  
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Monroe primers (8.1) for the detection and molecular characterization of NoV GI and GII (213 bp fragment):
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8.11 Miniguide - Trousse d'ARN viral QIAamp®. Décembre 2007. Disponible à l’adresse : http://www1.qiagen.com/literature/handbooks/literature.aspx?id=1000199
  OPFLP-10 Detection of n...  
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example: If the concentration of linearized plasmid containing NoV GII cDNA is 143.89 ng/µl then 1.439 X 10-7 g/µl
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Exemple : Si la concentration du plasmide linéarisé contenant l'ADNc des NoV de GII est 143,89 ng/µl, alors le nombre est 1,439 X 10-7 g/µl
  OPFLP-10 Detection of n...  
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NoV GII: (3931 bp + 98 bp) x 649 g/mol = 2.615 X 106 g/mol
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NoV de GII : (3 931 pb + 98 pb) x 649 g/mol = 2,615 X 106 g/mol
  OPFLP-10 Detection of n...  
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6.22 Monroe primers (MON-431, MON-432, MON-433 and MON-434) for the detection of NoV GI and GII by conventional RT-PCR and further molecular characterization of the NoV strain (See section 9.1 for DNA sequences).
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6.24 Amorces Kageyama (COG2F et COG2R) et sonde TaqMan® (RING2) pour la détection des NoV GII au moyen de la méthode de la TI-ACP en temps réel (voir la section 10.1 pour les séquences d'ADN).
  OPFLP-10 Detection of n...  
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7.5.1 Amplify RNA from each extracted RNA sample with the set of NoV primers (Kageyama GI COG1F/COG1R and/or Kageyama GII COG2F/COG2R; and/or MON 431/MON 432/MON 433/MON 434) using the OneStep RT-PCR kit from Qiagen®.
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7.5.4 Placer les tubes ACP ou la plaque à 96 puits dans un thermocycleur et procéder à l'amplification de la TI-ACP selon le programme décrit à la section 9.2.
  OPFLP-10 Detection of n...  
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11.1.1 Amplify NoV RNA with the set of real-time NoV primers ((GI: COG1F and COG1R; GII: COG2F and COG2R)) using the OneStep RT-PCR kit from Qiagen® with the RT-PCR program described under 9.2.
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11.1.1 Amplifier l'ARN des NoV avec les amorces des NoV en temps réel ((GI : COG1F et COG1R; GII : COG2F et COG2R)) à l'aide de la trousse de la TI-ACP Qiagen® OneStep et le programme de la TI-ACP décrit à la section 9.2.
  OPFLP-07 Detection of H...  
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2006. Development of an extraction and concentration procedure and comparison of RT-PCR primer systems for the detection of hepatitis A virus and norovirus GII in green onions. Journal of Virological Methods 134: 130-135.
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8.3 Houde A., Guèvremont E., Poitras E., Leblanc D., Ward P., Simard C. et Y.-L. Trottier. 2007. Comparative evaluation of new TaqMan real-time assays for the detection of hepatitis A virus.
  OPFLP-10 Detection of n...  
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6.21 Kageyama primers (COG2F and COG2R) for the detection of NoV GII by conventional RT-PCR (See section 9.1 for DNA sequences).
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6.23 Amorces Kageyama (COG1F et COG1R) et sondes TaqMan® (RING1(a) et RING1(b) pour la détection des NoV GI au moyen de la méthode de la TI-ACP en temps réel (voir la section 10.1 pour les séquences d'ADN).
  OPFLP-10 Detection of n...  
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11.6.5 The DNA fragment generated by the BamHI restriction endonuclease is 4016 bp (3931 bp plasmid + 85 bp NoV GI cDNA produced with COG1 primers) or 4029 bp (3931 bp plasmid + 98 bp NoV GII cDNA produced with COG2 primers) in molecular size.
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11.6.5 Le fragment d'ADN généré par l'endonucléase de restriction BamHI est de taille moléculaire de 4 016 pb (3 931 pb pour le plasmide + 85 pb pour l'ADNc des NoV de GI produit à l'aide des amorces COG1) ou de 4 029 pb (3 931 pb pour le plasmide + 98 pb pour l'ADNc des NoV de GII produit à l'aide des amorces COG2).
  OPFLP-10 Detection of n...  
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11.1.4 Prepare sample for electrophoresis: in a clean microfuge tube, mix 4.0 µl of tracking dye (nucleic acid loading buffer 10 X concentrated) and 40 µl of RT-PCR product. The amplicons (RT-PCR products) generated by the NoV GI primers and GII primers are double stranded DNA fragments of 85 bp and 98 bp, respectively.
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11.1.4 Préparer l'échantillon pour l'électrophorèse : dans un microtube propre, mélanger 4,0 µl de colorant de repérage (tampon -de largage 10 X) et 40 µl du produit de la TI-ACP. Les amplicons (produits de la TI-ACP) générés par les amorces des NoV de GI et de GI sont des fragments d'ADN à double brin de 85 bp et 98 bp, respectivement.
  OPFLP-10 Detection of n...  
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11.5.4 The two DNA fragments generated by the EcoRI restriction endonuclease are 3921 bp (plasmid) and 95 bp (85 bp of NoV GI cDNA produced with COG1 primers + 10 bp of plasmid) or 3921 bp (plasmid) and 108 bp (98 bp NoV GII cDNA produced with COG2 primers + 10 bp of plasmid) in molecular size.
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11.5.4 Les deux fragments d'ADN générés par l'endonucléase de restriction EcoRI sont de taille moléculaire de 3 921 pb (pour le plasmide) et de 95 bp (85 pb pour l'ADNc des NoV de GI produit à l'aide des amorces COG1 + 10 pb pour le plasmide) ou de 3 921 pb (pour le plasmide) et de 108 pb (98 pb pour l'ADNc des NoV de GII cDNA produit à l'aide des amorces COG2 + 10 pb pour le plamide). Par conséquent, les bandes d'une taille moléculaire de 95 pb ou 108 pb, comparativement à un marqueur de taille moléculaire d'ADN (p. ex. marqueur de taille des fragments d'ADN en incréments de 100 pb) analysé sur le même gel, peuvent être confirmées comme étant de l'ADNc des amorces des NoV de GI et/ou GII, respectivement.
  OPFLP-10 Detection of n...  
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(a), RING1 (b); GII: COG2F, COG2R, RING2) using the Brilliant® II QRT-PCR Core Reagent kit from Stratagene® or equivalent. Perform, in triplicate, a minimum of 5 to 6 points of the corresponding validated standard curve of known concentration of copy numbers.
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7.9.5 Après avoir complété l'analyse de la TI-ACP en temps réel, analyser les réactions à l'aide du logiciel de la série MX® ou du logiciel fourni avec le thermocycleur spectrofluorométrique. Si nécessaire, les amplicons peuvent être entreposés à 4°C pour analyse ultérieure.
  OPFLP-10 Detection of n...  
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7.7.1 The amplicons (RT-PCR products) generated by the NoV Kageyama GI COG1F/COG1R, Kageyama GII COG2F/COG2R and MON 431/MON 432/MON 433/MON 434) primers are double stranded DNA fragments of 85 bp, 98 bp and 213 bp, respectively.
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7.7.4 Toute bande correspondant au témoin positif qui apparaît pour le témoin négatif avec le jeu d'amorces des NoV indique une possibilité de contamination de l'échantillon par le mélange de réaction de la TI-ACP; le lot complet est considéré comme douteux et il doit être éliminé. Les échantillons doivent être amplifiés de nouveau avec un nouveau lot de réactifs.
  OPFLP-10 Detection of n...  
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11.5.4 The two DNA fragments generated by the EcoRI restriction endonuclease are 3921 bp (plasmid) and 95 bp (85 bp of NoV GI cDNA produced with COG1 primers + 10 bp of plasmid) or 3921 bp (plasmid) and 108 bp (98 bp NoV GII cDNA produced with COG2 primers + 10 bp of plasmid) in molecular size.
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11.5.4 Les deux fragments d'ADN générés par l'endonucléase de restriction EcoRI sont de taille moléculaire de 3 921 pb (pour le plasmide) et de 95 bp (85 pb pour l'ADNc des NoV de GI produit à l'aide des amorces COG1 + 10 pb pour le plasmide) ou de 3 921 pb (pour le plasmide) et de 108 pb (98 pb pour l'ADNc des NoV de GII cDNA produit à l'aide des amorces COG2 + 10 pb pour le plamide). Par conséquent, les bandes d'une taille moléculaire de 95 pb ou 108 pb, comparativement à un marqueur de taille moléculaire d'ADN (p. ex. marqueur de taille des fragments d'ADN en incréments de 100 pb) analysé sur le même gel, peuvent être confirmées comme étant de l'ADNc des amorces des NoV de GI et/ou GII, respectivement.